Toma De Muestras De Laboratorio 5s2w31

PROTOCOLOS DE LABORATORIO

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TOMA DE MUESTRAS Y NORMAS GENERALES EN EL MANEJO DE LA MUESTRA

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HISTORIAL DE CAM BIOS DEL DOCUMENTO Versión antes de actualización 01

Fecha actualización

Naturaleza del cambio

Junio de 2009 Se revisan y actualizan todos los Julio de 2011 procedimientos de bioseguridad que se deben aplicar en el laboratorio clinico SOMER.

NOS COMPROMETEMOS A LA APLICACION DE ESTE MANUAL Fecha

Nombre Legible

Elaboró y/o actualizó Cargo

Bacteriologa de Sección:

Nombre ESILA GOMEZ Fecha

Junio de 2009

Firma

Revisó

02

Aprobó

Coordinbador de Calidad

Director Médico

FABIO RESTREPO

FABIO RESTREPO

Agosto de 2009

Agosto de 2009

LABORATORIO CLÍNICO SOMER

TOMA DE MUESTRAS Y NORMAS GENERALES EN EL MANEJO DE LA MUESTRA

DIRECCION CIENTIFICA

TABLA DE CONTENIDO

GENERALIDADES 1. IMPORTANCIA DE LA TOMA DE MUESTRAS 2. RECOMENDACIONES PARA LA ATENCION 3. GANE HABILIDAD, CONFIANZA Y PROFESIONALISMO 4. INFORMACION BASICA EN EL SITIO DE TOMA DE MUESTRAS. 5. IDENTIFICACIÓN DE PACIENTES O S DEL LABORATORIO. 6. NORMAS DE BIOSEGURIDAD EN EL PUNTO DE TOMA DE MUESTRAS. 7. USO DE ANTICOAGULANTES 8. COMO REALIZAR LA PUNCIÓN VENOSA 9. TOMA DE MUESTRAS PARA QUÍMICA CLÍNICA 10. TOMA DE MUESTRAS PARA HEMATOLOGÍA 11. TOMA DE MUESTRAS PARA PRUEBAS INMUNOLOGICAS Y SEROLOGICAS 12. TOMA DE MUESTRAS PARA MICROBIOLOGIA Y ESTUDIOS MICROSCÓPICOS 13. TOMA DE MUESTRAS EN PARASITOLOGÍA 14. TOMA DE MUESTRAS PARA MICROBIOLOGÍA (CULTIVOS). 15. TOMA DE MUESTRAS PARA CITOLOGÍA CERVICO

VAGINAL

16. TOMA DE MUESTRAS PARA PRUEBAS ESPECIALIZADAS

17.

REMISIÓN TRANSPORTE Y ENVÍO DE MUESTRAS

18. REMISION DE MUESTRAS DE ONCOLOGIA (CITOMETRIAS DE FLUJO, BIOPSIAS, CARIOTIPOS, MIELOGRAMAS, COLORACIONES ESPECIALES E INMUNOHISTOQUIMICA) BIBLIOGRAFÍA

“La calidad en salud esta dada por el conjunto de características técnico científicas, humanas, financieras y materiales que debe tener la Seguridad Social en Salud, bajo la responsabilidad de las personas e instituciones que integran el sistema y la correcta utilización de los servicios por parte de los s”. “Las características principales de la calidad de la atención en salud son: la accesibilidad, la oportunidad, la seguridad y la racionalidad técnica. La calidad integra características adicionales como la idoneidad y competencia profesional, la disponibilidad y suficiencia de recursos, la eficacia, la eficiencia, la integralidad, la continuidad, la atención humanizada y la satisfacción del con la atención recibida”. Art. 3 Decreto 2174 de noviembre de 1996.

"DE UNA BUENA MUESTRA DEPENDE UN BUEN RESULTADO"

0.1 Actividades, funciones y actitud en la toma de muestras: La toma de mustras en el laboratorio clínico SOMER, sera´coordinada por una bacteriologa de planta en cuyo cuadro de turnos del mes aparecera la programación de dicha responsabilidad. El horario de atencion será de 6 y 45 a.m hasta las 10 a.m. y se dedicara durante este tiempo exclusivamente a estas funciones, vigilando, apoyando y coordinando toda la toma de muestras realizada por las auxiliares de laboratorio y/o de enfermería de acuerdo a los siguientes parámetros: 1.

Atender cordial y cortésmente los pacientes y/o s del laboratorio.

2.

Atender cordial y cortésmente a todos los pacientes y personas que soliciten información sobre las actividades propias del laboratorio.

3.Conocer y aplicar los procedimientos istrativos de atención a pacientes de las diferentes

EPS, contratos y particulares. 4.

Registrar correctamentelos datos demograficos y demás de los pacientes atendidos, que incluya nombres y apellidos completos, edad, sexo, número de la cédula de ciudadanía, teléfono y número de carné o de afiliación a la EPS.

Responder económicamente ante la istración de la clínica por los dineros recibidos por concepto de servicios particulares y otros pagos.

5.

Identificar, registrar, tomar, recibir y transportar las muestras que se procesen en el laboratorio o desplazarse cuando se requiera a los sitios de toma de muestra contratados.

6.

7.

Cumplir estrictamente las Normas de Bioseguridad establecidas por el Laboratorio.

8.

Realizar procesos de centrifugación, coloración de láminas, montaje de coprologicos y sedimentos urinarios y demás actividades propias de la central de muestras.

9.

Cumplir las Normas de Eliminación de desechos.

10.

Diligenciar diariamente los registros y estadísticas solicitadas.

11.

Mantener en perfecto orden y aseo neveras, estantes, muebles y en general las áreas o secciones de trabajo asignadas; recoger material sucio y disponerlo adecuadamente.

12.

Arreglar y organizar el material especial de cada sección de trabajo en el laboratorio.

13.Arreglar el material del laboratorio que será reciclado cumpliendo las normas de preesterilización, lavado, enjuague, secado, empaque y esterilización. Mantener material suficiente de consumo diario arreglado para su disposición como: torundas de algodón envueltas y esterilizadas, gasas, escobillones, bajalengua, placas, laminillas etc. 14.

Planificar unas cantidades mínimas de materiales necesarios para la atención de pacientes de acuerdo al volumen atendido. 15.

16.

Responder por el inventario a su cargo.

17.

Cumplir con los horarios y los turnos de programación de sábados y descansos.

18. Cumplir con las normas generales de organización y funcionamiento del laboratorio y demás reglamentos internos del Laboratorio.

.

1.IMPORTANCIA DE LA TOMA DE MUESTRAS •Es casi siempre el primer y quizás el único o con el paciente, o cliente. •La imagen que se proyecte es la que queda fijada en las personas atendidas. •La gran responsabilidad en la toma de muestras se extiende desde la calidad de

la atención humanizada como la eliminación de errores técnicos que influyan en los resultados finales. •La calidad de la muestra obtenida garantiza de por si un buen resultado final de su análisis. •El trabajo responsable de cada auxiliar que toma muestras, garantiza y justifica la confianza depositada por el personal profesional y el laboratorio, pues, se manejan un sinnúmero de especímenes que conllevan una responsabilidad ética, profesional y judicial que comprometen todo el equipo de trabajo. 2.RECOMENDACIONES PARA LA ATENCIÓN: Al realizar algún procedimiento de toma de muestras, tenga en cuenta las siguientes recomendaciones: •Actuar con la mayor amabilidad y educación posible. •Procurar que el paciente se incomode lo menos posible. •Trasmitir confianza, seguridad y profesionalismo durante el procedimiento. •Recolectar la muestra con la mejor calidad. •Obtener suficiente cantidad de espécimen de acuerdo a los requerimientos de cada análisis a practicar. •Manifestar permanentemente actitudes de colaboración. •Demostrar acciones indudables de Bioseguridad. 3.GANE HABILIDAD, CONFIANZA Y PROFESIONALISMO: •Conozca y aprenda perfectamente los procedimientos y técnicas que se ejecutarán. •Obtenga confianza a medida que aumenta su experiencia. •Desarrolle habilidades frente a la comunicación con los pacientes. •Entienda que no se está excento, aún en las mejores condiciones , de cometer errores durante algún procedimiento. Cometer una falla, debe promover una actitud de aprendizaje y no constituye un hecho de fracaso, debe corregirse el error cometido para que idealmente no vuelva a suceder. •Mantenga una actitud de calma.

•Piense: “he realizado este procedimiento muchas veces y lo seguiré realizando bien muchas veces más”. •No trasmita actitudes que denoten prisa, afán o preocupación. •Procure que cada paciente se sienta importante para usted. •Toda actitud califica su grado como “profesional”. •Sonría amablemente. •Vista ropas conservadoras y limpias. Refleje una adecuada higiene personal. Su uniforme, bata de laboratorio y zapatos deben estar en buenas condiciones. •Si utiliza cabello largo, procure conservarlo recogido. •Sus manos y uñas deben mantenerse en óptimas condiciones de aseo. •Si utiliza guantes, procure que sean de talla adecuada. 4.INFORMACION BASICA EN EL SITIO DE TOMA DE MUESTRAS. Al atender una sucursal del laboratorio, verifique que estén presentes los siguientes documentos, pues son de obligatoria presencia, serán reclamados por las personas que realizan el seguimiento de calidad de cada una de las EPS e IPS.

Manuales de toma de muestras. Manuales de procedimientos. Manual de coloraciones. Indicaciones de toma de muestras para pacientes. Normas de Bioseguridad. Manejo y eliminación de desechos. Listas de precios. Manejo de la diferente papelería de las EPS. Horarios de toma de muestras. Registro diario de pacientes y del total de pruebas a realizar y por EPS.

5.IDENTIFICACIÓN DE PACIENTES O S DEL LABORATORIO. Al atender a todo paciente o , se debe consignar la siguiente información de identificación: Nombres completos. Apellidos completos (2) Edad. Sexo. Número de la cédula de ciudadanía. Teléfono. Número de afiliación a la EPS. (Número de Carné).

NOTA:Todos estos datos, deben ser registrados en los cuadernos de trabajo rutinario de cada sucursal en el laboratorio central.

6.NORMAS DE Bioseguridad en el punto de toma de muestras. Protección personal y general: Es obligatorio el uso del delantal o bata de laboratorio durante la jornada diaria de toma de muestra. Es obligatorio el uso de guantes durante la toma y manipulación de muestras, para la toma de cada citología se debe utilizar un par de guantes diferente. Nunca intente reempacar las agujas en su capuchón, use el guardián o en su defecto arrójelas en el balde con hipoclorito Se recomienda el uso de tapa boca o mascarilla y gafas para la toma de citología. Se prohibe el uso de la nevera para guardar alimentos propios ajenos, esta es un lugar potencialmente patógeno aun con lavados y desinfecciones rutinarias. Esta totalmente prohibido comer cualquier tipo de alimentos dentro del recinto de toma de muestras, para ello deberán desplazarse a los cafetines de cada sucursal o en su defecto hacerlo fuera del lugar de trabajo. Evite el o de la piel o mucosas con la sangre u otras secreciones de todos los paciente, todas la muestras son potencialmente transmisores de enfermedades (VIH, Virus Hepatitis B, etc.). Lavarse las manos inmediatamente antes y después de realizar cualquier procedimiento en la sucursal. Recuerde que los guantes, no son sustitutos del lavado de las manos y piel debido a la variabilidad de su calidad. •Evite siempre llevar las manos a la cara, boca y ojos cuando este tomando muestras. •No fumar ni maquillarse en el área de trabajo. •Cualquier chuzón, herida y/o posible contaminación con líquidos biológicos o material contaminado, deberá ser reportado al laboratorio para ser manejado como un accidente de trabajo, en su defecto el laboratorio estará excento de toda responsabilidad. •Registre la temperatura de la nevera y la hora en que lo hizo en la planilla. Hágalo preferiblemente al llegar y siempre la primera vez que abra la nevera. •Haga una limpieza mensual de la nevera con hipoclorito de sodio al 0.5% y registre en la hoja de la temperatura. “EL RIESGO LABORAL DEL TRABAJADOR DE LA SALUD ES MÍNIMO, SI SE CONOCEN Y RESPETAN LAS NORMAS DE BIOSEGURIDAD EXISTENTES”

7.USO DE ANTICOAGULANTES: Existen múltiples factores involucrados en el proceso de coagulación de la sangre. Los anticoagulantes son sustancias que previenen la formación de coágulos. Existen diferentes tipos de ellos en polvo o líquidos. Debe seleccionarse siempre el anticoagulante apropiado según el estudio que se quiera realizar. 7.1EDTA: Etilen-Diamino-Tetra-Acetato. Este tipo de anticoagulante es utilizado principalmente cuando se realizan estudios en donde se cuentan células como en hematología; también para la electroforesis de hemoglobinas. 7.2CITRATO DE SODIO: Generalmente en concentraciones de 3.8 % y se utiliza comúnmente en estudios de coagulación: Tiempo de Protrombina, Tiempo de Trombina, Tiempo de Tromboplastina Parcial Activado, Antitrombina III, Anticuagulante Lúpico, Fibrinogeno, Plasminógeno,entre otros; estas muestras deben ser separadas en un termino no mayor de una hora y el plasma colocado en un tubo plástico y estar bajo refrigeración. Ver pruebas de Coagulación. 7.3HEPARINA: Se utiliza en algunos estudios de rutina como especializados. Su presentación puede incluir concentraciones de sodio o litio. En general, la heparina con litio es utilizada para estudios de química y la heparina sódica se utiliza para estudio de linfocitos (p.ej. HLA). 7.4OXALATOS: Son anticoagulantes menos comunes, utilizados ocasionalmente en las determinaciones de glucosa. Existen códigos de colores internacionales conocidos, para los diferentes presentaciones de tubos colectores de muestras sanguíneas, que contienen determinado anticoagulante:

Tapa Roja...........................Sin Anticoagulante (Tubo Seco). Tapa Violeta.......................Con EDTA. Tapa Azul...........................Con Citrato de Sodio. Tapa Verde (o blanca)........Con Heparina. Tapa Gris............................Con Oxalatos. También se pueden conseguir tubos cuya característica presenta un gel o filtro separador de suero, formando una barrera entre el suero separado y las células sanguíneas. Se encuentra en forma comercial como “Tubos separadores de suero” (SST).

8.COMO REALIZAR LA PUNCIÓN VENOSA Existen dos tipos de tiempos en los exámenes. El primer tiempo (tiempo simple), cuando se trata de un examen que solo requiere una punción. El segundo tiempo (tiempo múltiple), cuando el examen amerita y comprende diferentes muestras en diferentes tiempos. En cualquiera de los dos casos, deben darse las indicaciones necesarias al paciente en cuanto a preparación, toma de medicamentos, forma de esperar para tomar segundas muestras, etc. Para realizar una correcta toma de muestra sanguínea, siga claramente las siguientes instrucciones: •Identificación del paciente, llámelo para ser sangrado. •Nombres y apellidos completos, código de recepción y edad. •Verificación del ayuno, tratamientos. •Informe al paciente sobre el procedimiento a seguir, tranquilizarlo. •Identifique los elementos para la toma de la muestra. ( tubos, placas, frascos, etc. ) •Colocar al paciente en una posición adecuada (segura y cómoda). •Nunca practique la punción sanguínea en un paciente que se encuentre de pie. •Preparar los materiales: tubos, torniquetes, algodón , alcohol, jeringas, agujas, adaptador del venojet, etc. •Colocarse los guantes. •Hacer cerrar suavemente el puño al paciente para palpar la vena. •Seleccionar la vena adecuada, la más visible y palpable. •No elija una extremidad en donde este colocada una venoclisis. •Limpiar la zona de venupunción (con algodón impregnado de alcohol yodado ) comenzando en el punto central y de ahí hacia afuera. •Aplicar el torniquete por no más de 30 segundos. •Fijar la vena firmemente. •Realizar la punción en un ángulo de 15 grados; seguir la dirección de la vena con la aguja; no enterrar la aguja. •Suelte el torniquete cuando la sangre fluya al tubo. •Extraída la muestra, indicar al paciente que relaje el puño y que no bombee con la mano. •Colocar un algodón sin alcohol, con presión suave sobre el punto de punción. •Mezclar los tubos con anticoagulante suavemente para evitar la hemólisis. •Observar el estado del paciente. ( mareos, hemorragias etc. ) •Dar indicaciones sobre entrega de resultados. •Eliminar adecuadamente el material contaminado. •Registrar la hora de extracción de la muestra. •Para la evitar la contaminación de las muestras en la punción se recomienda, extraer primero los tubos sin aditivos y luego los tubos con CITRATO y EDTA. •Al finalizar el procedimiento, indique al paciente que debe conservar la extremidad doblada con el algodón, por un tiempo de más o menos tres minutos para evitar sangrar nuevamente. •Recuerden: Una excelente muestra es sinónimo de un resultado veraz y confiable, con calidad.

9.TOMA DE MUESTRAS PARA QUÍMICA CLÍNICA. La química clínica comprende gran cantidad de pruebas de laboratorio para evaluar diferentes órganos y funciones; pero las más comúnmente indicadas para valorar o monitorear cuadros clínicos generalizados o específicos son: Glicemia Perfil Lipídico Ácido úrico Urea Creatinina Fósforo.

Transaminasas (GOT-GPT ) Bilirrubinas Total y Directa Albúminas Fosfatasas Alcalinas Fosfatasas Ácidas Fosfatasas Prostáticas

Amilasas. Ionograma. (Cl, Na, K.) Deshidrogenasa Láctica. Magnesio.

Para ellas se debe sangrar en tubo seco (sin anticoagulante) para la obtención de un volumen de suero aproximado de 5 a 10 ml para cada una de las pruebas, si son muchas las pruebas a realizar, se deberán sangrar dos o más tubos; al recoger la sangre dejar que se coagule para luego llevar a centrifugación. 9.1INSTRUCCIONES GENERALES: •Ayuno mínimo de ocho ( 8 ) horas. El ayuno no debe superar las doce horas. •Evitar ejercicio físico, especialmente horas antes de la toma de muestra. •Reposo del paciente de 10 a 15 minutos antes de la sangría. •No ingerir licor el día anterior •No fumar antes de la sangría. •Preguntar al paciente que drogas está tomando, anotarlas. •No aplicar el torniquete por más de 30 segundos. •Si es una urgencia, anotar que no tiene ayuno. 9.2CONDICIONES ESPECIALES:

9.2.1Curva de Tolerancia a la Glucosa: •Se requiere un ayuno estricto ocho (8) horas antes de la prueba. •El paciente, debe permanecer en reposo durante la prueba, y deberá abstenerse de beber líquidos, fumar, comer y hacer ejercicio. •Sangrar el paciente en ayunas. •Hacer una glucosuria o una glicemia por GLUCOMETER o con tirilla de DESTROSTIX, para verificar que la glicemia basal del paciente sea inferior a 140 mg/ dl. o que tenga una glucosuria negativa.

•En caso de que el paciente presente hiperglicemia Remitir inmediatamente al médico con una nota del valor observado. •Dar a tomar la carga de glucosa requerida ( 75 o 100 gramos, 50 si es tamizaje), en un lapso no mayor de diez minutos. •Preparar la carga de Glucosa de 100 y 75 gramos en 300 ml de agua, y la carga de glucosa de 50 gramos en 200 ml de agua. •El tiempo entre cada punción debe ser exacto: 1 h -- 2 h -- 3 h -- 4 h. •En la glicemia post-prandial post-desayuno, se toma la primera muestra para la glicemia en ayunas y se indica al paciente que tome un desayuno rico en carbohidratos (miel, azúcar, mermelada, pan, tostadas, arepa etc.) y que regrese al laboratorio exactmente a las dos horas para tomar la muestra post-prandial. •En la glicemia post-prandial post-carga, se toma la primera muestra para la glicemia en ayunas y se da al paciente una carga de 75 gramos de glucosa y se toma la muestra postpandrial exactamente a las dos horas. •El test de O´sullivan o tamizaje para embarazadas, se toma la primera muestra en ayunas y se da una carga de 50 gramos de glucosa, luego se toma una segunda muestra a la hora exacta para cuantificar la glucosa post-carga. 9.2.1.1MANEJO DEL GLUCOMETER •Realizar la asepsia al paciente en el dedo que se va a puncionar con algodón y alcohol. •Sacar los sobres de aluminio de la caja y separar uno. •Para abrir el sobre de aluminio. Tirar de los extremos con cuidado. Doblar hacia atrás los extremos de la tira reactiva que se introduce en el medidor. •Sujete el extremo de la tira reactiva entre las dos partes del sobre de aluminio abierto, e introduzca la tira totalmente dentro del medidor. •Sonará un pitido y visualizará la imagen 88.8 en pantalla, seguida de un número de función (F) y los resultados de la prueba anterior. El número de función y los resultados de la prueba anterior comienzan a parpadear alternativamente. Quite el papel metálico de la tira reactiva. Proceda inmediatamente (dentro de un período de tres minutos) al paso siguiente: •Puncione el dedo con una lanceta o un dispositivo automático de punción y presione hasta obtener una pequeña gota de sangre. •Acerque el extremo externo de la tira reactiva para absorber la gota de sangre hasta que pite el medidor. La tira reactiva aspira automáticamente la sangre. El cronómetro comienza la cuenta atrás empezando desde 29 segundos. •Una vez pasados los 29 segundos aparece el resultado de la prueba de glicemia en la pantalla. Los resultados de la prueba permanecen en la pantalla. •Si desea guarda los resultados de la prueba, extraiga la tira reactiva del medidor utilizando un pañuelo. El medidor se apaga de forma automática y los resultados se guardan en la memoria. •Si no desea guardar los resultados de la prueba en la memoria, extraiga la tira de prueba utilizando un pañuelo de papel y vuelva a introducirla rápidamente en el medidor (dentro de un período de dos segundos).

Aparecerá dEL en la pantalla y los resultados de la prueba no se guardarán en la memoria. No extraiga la tira reactiva del medidor hasta que la pantalla de visualización se quede en blanco o de lo contrario los resultados de la prueba no se borrarán. 1.1.1Urea-- Bun-- Ácido Urico: •24 horas antes de las pruebas el paciente debe llevar una dieta pobre en proteínas (carnes rojas) y grasas. 9.2.2Creatinina --Albúmina -- Electroforesis de Proteínas--Proteínas en 24 horas y Depuración de Creatinina: •El paciente debe evitar ejercicio físico intenso por lo menos ocho horas antes del examen. •Proteínas en 24 horas y la depuración de creatinina requieren una orina de 24 horas para su evaluación. Ver recolección de orina de 24 horas. 9.2.3Bilirrubinas: •Inmediatamente después de separado el suero, envolver el tubo en papel aluminio. La luz disminuye rápidamente éste compuesto. 9.2.4Ionograma: •La punción debe ser directa y sin traumatismos. •No aplicar torniquete. •Punciones traumáticas y sueros hemolizados aumentan los valores como el potasio. 10.TOMA DE MUESTRAS PARA HEMATOLOGÍA: Las muestras para Hematología se realizan principalmente para evaluar alteraciones celulares como anemias, leucemias, reacciones leucemoides; también se evalúa la respuesta a tratamientos hematopoyeticos e infecciones y enfermedades que producen alteración de las células sanguíneas con cuadros clínicos similares. Para ellas se debe sangrar en tubo con EDTA para recuentos celulares y Citrato de Sodio para las pruebas de coagulación (con anticoagulante) , basta con la obtención de un volumen de sangre total aproximado de 10 ml para cada una de las pruebas. Se debe sangrar primero el tubo para pruebas de coagulación y luego para el hemograma. Las pruebas más comunes que se pueden realizar con esta muestra son entre otras: Hemograma completo Hemoglobina ,Hematocrito. Hemoglobina Glicosilada Reticulocitos

Hemoparásitos Hemoclasificación. Prueba del Ciclaje para Drepanocitos. Electroforesis de Hemoglobinas.

Células LE •El paciente no necesariamente debe estar en ayunas o condiciones especiales. •Estas pruebas se pueden realizar en cualquier momento del día . •No utilizar el torniquete por más de 30 segundos. Ver punción venosa. •Hacer un extendido en placa inmediatamente después de la punción. •Mezclar suavemente para evitar formación de coágulos.

10.1PRUEBAS DE COAGULACIÓN:

10.1.1Tiempo de Protrombina(TP), Tiempo parcial de tromboplastina (TPT), Fibrinógeno. •No utilizar torniquete. •Preguntar al paciente que drogas está tomando (Cumadín, etc.). Anotarlas. •Utilizar tubo con Citrato de Sodio. ( tapa azul - Plasma ) •Anotar hematomas y petequias existentes. •Los antistaminicos, el ácido ascorbico, clorpromacina, heparina y salicilatos prolongan el TPT. •La ingestión de Alcohol, barbituricos, antibioticos, ácido aminosalicilico, allopurinol, aumentan el TP, Una dieta rica en grasas puede reducir su nivel. 10.1.2Tiempo de coagulación : •Hacer una punción directa y limpia con jeringa de 5 ml para la toma de muestra. •Extraer de tres a cinco ml de sangre , cronometrar el tiempo desde el momento en que se penetró la vena. •Repartir la sangre extraída en tres tubos sin anticoagulante con aproximadamente un centímetro por tubo, dejando caer por las paredes. •Llevar inmediatamente a un baño maría para incubar a 37 grados centígrados ; cada treinta segundos, observar los tubos hasta que coagulen completamente. •Se deben anotar los tres tiempos individuales y hacer un promedio obteniendo así el tiempo de coagulación. •Los valores normales son de 5 a 15 minutos. 10.1.3Tiempo de sangría: Método de Duke (lanceta): •Limpiar con alcohol el lóbulo de la oreja (si usa arete se debe retirar). •Mantener unos segundos presionado el lóbulo de la oreja, permitiendo que su interior contenga mayor cantidad de sangre. •Con una lanceta nueva, estéril y desechable, hacer una punción en la zona presionada del lóbulo de la oreja.

•Contabilizar con cronómetro o segundero, el tiempo que tarda en coagular la sangre proveniente de la pequeña herida efectuada. •Limpiar cada treinta (30) segundos el sangrado. Debe hacerse con papel de filtro tomando la gota de sangre muy superficialmente. •Cuando el papel de filtro ya no se impregne de sangre, se detiene el reloj o cronómetro y se contabiliza el tiempo que tardó en coagular el paciente desde el momento de la punción hasta el momento en que el papel de filtro deja de impregnarse. 10.1.4Tiempo de sangría : Método de Ivy (con Tensiómetro): •Colocar el tensiómetro en el tercio superior del brazo a una presión de 40 mm de mercurio ( Hg). •Hacer asepsia en la parte interna del antebrazo donde no este muy vascularizada. •Efectuar tres punciones rápidas con lanceta estéril a tres centímetros de separación. •Inmediatamente colocar en marcha el cronómetro y cada treinta segundos limpiar con papel de filtro la sangre pero sin tocar el sitio de punción. •Parar el cronómetro cuando la hemorragia se detenga. Anotar el tiempo. •Los valores normales son de 2 a 5 minutos. 10.2CÉLULAS LE: •La muestra debe tomarse en tubo con anticoagulante (EDTA) y con perlas de vidrio para realizar una desfibrinización de la sangre. 10.2.1TOMA DE LA MUESTRA PARA HEMOPARÁSITOS: •Se utiliza sangre total. •Limpiar con algodón empapado en alcohol la yema del dedo del paciente, punzar con lanceta estéril (o en su defecto con una aguja de jeringa). •Limpiar con algodón seco la primera gota de sangre y luego tomar las dos gotas siguientes colocando en los extremos de una placa de vidrio previamente marcada. •Con cada una de las gotas y con el extremo de otra placa, hacer en forma de N o en zigzag dos extendidos de un centímetro por un centímetro o de forma rectangular. •Dejar secar los extendidos al aire libre para colorear. •Cuando el paciente ha recibido drogas antimaláricas, se aconseja tomar muestras cada seis horas, durante tres días. 11.TOMA DE MUESTRAS PARA PRUEBAS INMUNOLOGICAS Y SEROLOGICAS Estas pruebas evalúan diferentes patologías, son una gran cantidad de exámenes que se pueden realizar en las muestras serológicas, pero las más comunes son:

VDRL - Serología Factor rematoideo ( RA- Látex) Antiestreptolisinas (AELO- ASO) Proteína C Reactiva ( PCR ) VIH ( SIDA )

Seroaglutinaciòn para febriles Prueba inmunologica de embarazo(PIE ) Hemoclasificación. FTA- ABSORBIDO- VDRL confirmatoria. Antígeno Superficial de V. Hepatitis B

Se debe sangrar en tubo seco sin anticoagulante (obtención de suero) un volumen aproximado de 10 ml para todas pruebas, si son muchas se tomarán dos o más tubos. La prueba inmunologica de embarazo también puede ser realizada en una muestra de orina. •Se recomienda un ayuno de ocho horas, pero generalmente se pueden realizar sin condiciones especiales. •No ingerir el día antes grasas ni bebidas alcohólicas. •La prueba inmunologica de embarazo (PIE) requiere que la paciente tenga un retraso mínimo de ocho días en la menstruación. •Para el VIH se debe llenar el formato de información especial que es requerido por la legislación. 12.TOMA DE MUESTRAS PARA MICROBIOLOGIA Y ESTUDIOS MICROSCÓPICOS 12.1ORINA PARA CITOQUIMICO O UROCULTIVO: •La muestra de orina debe tener varias horas después de la ingesta de alimentos. •La orina debe tener cuatro (4) horas de retenida, preferiblemente la primera orina de la mañana. •Lavar los genitales con agua y jabón, retraer el prepucio si es hombre , separar los labios vaginales si es mujer. •Descartar la primera parte de la micción, de 15 a 30 ml. •Recoger los siguientes 50 a 100 ml directamente en frasco estéril, tapar inmediatamente. •Llevar la orina en el menor tiempo posible al laboratorio o refrigerar no más de una hora. •El frasco debe ser limpio, preferiblemente estéril, seco, tapa rosca, boca ancha y debe ser bien marcado. •En niños, puede utilizarse una bolsa plástica estéril colectora de orina. la bolsa se colocará después de haber lavado los genitales adhiriéndola a la piel por medio de un anillo adhesivo; si no es posible recolectar la orina en los siguientes 45 minutos, deberá cambiarse la bolsa por una nueva. •Otros métodos de recolección de la orina como uso de catéteres y punción suprapúbica están reservados para que lo hagan los médicos.

12.2RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS: •Orinar por la mañana al levantarse y anotar exactamente la hora (esta orina no se recolecta). •Recolectar las micciones (muestras) posteriores de orina (mañana, tarde y noche) en el recipiente proporcionado por el laboratorio, o en una garrafa de aguardiente limpia. El recipiente debe ser preferiblemente de color opaco. Conservar el frasco en la nevera la recolección (refrigerado). •Al dia siguiente, exactamente a la misma hora en que la orina fue desechada el día anterior, se recoge la última muestra. •Conservar el frasco durante el estudio. •En caso de olvidar recolectar o perder parcial o totalmente alguna porción de la orina, deberá iniciarse nuevamente la recolección para el estudio. La muestra de orina de 24 horas se utiliza para las siguientes pruebas: Depuración de Creatinina, Proteinuría, Microalbuminuria, Cortisol libre en orina. 12.3BACTERIOLÓGICO DE FLUJO VAGINAL :

12.3.1INDICACIONES: •La paciente no debe hacerse lavados o duchas vaginales 24 horas antes del examen. •La paciente no debe haber utilizado medicamentos por vía vaginal tres (3) días antes del examen. •La paciente no debe haber tenido relaciones sexuales horas antes del examen. •Se le explicará a la paciente el procedimiento que se realizará. •La paciente no debe estar menstruando. •Se sugiere que la paciente elimine (orine) antes de tomarle la muestra. 12.3.2TOMA DEL FLUJO VAGINAL: •Colocar a la paciente en una camilla en posición ginecológica donde haya una buena iluminación para la visualización, recomendar a la paciente que se relaje para mayor comodidad y facilitar la toma de la muestra. •Usando guantes separar los labios para localizar el introito vaginal, introducir el especulo en forma vertical, rotarlo hasta que quede en forma horizontal e introducirlo hasta encontrar el cuello uterino; abrir y fijar el especulo para evitar que se cierre. •Una vez visualizado el cuello uterino, remover el exceso de moco cervical con una gasa montada en unas pinzas o con aplicador; introducir un aplicador estéril en el canal endocervical y rotar suavemente, esperar unos segundos para permitir la absorción de los gérmenes al aplicador, retirar el aplicador y hacer el frotis rotando suavemente la muestra para que no se rompan las estructuras celulares sobre el porta objetos.

•Marcar esta muestra como END (endocervix), ésta muestra es importante porque en ella vamos a buscar diplococos gram negativos intracelulares compatibles con Neisseria gonorreae, es importante porque la mujer puede ser portadora asintomática de esta bacteria. •Colocar el aplicador en un tubo con solución salina 0.85 %. •Con un nuevo aplicador tomar la muestra de fondo de saco porque allí es donde se alojan los microorganismos como Trichomonas y Hongos; observar si se presenta el eritema característico de la infección por trichomonas. Colocar la muestra en el porta objetos y marcar como FS (fondo de saco) y el aplicador en la solución salina. •Tomar el pH del flujo con Papel Tornasol directamente al tomar el flujo con el último de los aplicadores antes de colocarlo en la solución salina. •Retirar el especulo y descartar en un balde con solución de hipoclorito de sodio. •Dejar secar al aire libre y fijar en alcohol al 95% lo mas pronto posible para luego colorear por gram.

12.4SECRECIÓN URETRAL : •Con un aplicador de dacrón tomar la muestra directamente de la uretra arrastrando buena cantidad de muestra. Extender sobre un porta objetos limpio rotando para no dañar las estructuras celulares. Colocar el aplicador en solución salina 0.85%. •Rotar nuevamente con otro aplicador e introducirlo en la solución salina. •Dejar secar la muestra al aire libre y fijar suavemente al calor 2 a tres veces utilizando mechero de alcohol. •Colorear por gram haciendo control de la tinción. •Si la secreción es escasa, hacer un bacteriológico de orina de la primera porción de la orina de la mañana.

12.5ESPERMOGRAMA :

12.5.1INSTRUCCIONES: •El laboratorio debe suministrar siempre las instrucciones por escrito para evitar muestras mal recogidas. •El recipiente debe ser apropiado (boca ancha) preferiblemente estéril y sin sustancias preservativas. •El paciente debe conservar abstinencia sexual de 2 a 5 días. No debe haber más de siete días de abstinencia sexual. •El paciente debe abstenerse de ingerir bebidas alcohólicas durante varios días previos al examen. •El paciente no debe haber presentado episodios de fiebre recientes, ni haber sometido a intervenciones quirúrgicas ni a tratamientos farmacológicos prolongados; en cualquier caso el examen debe aplazarse aproximadamente durante un ciclo espermatogénico, es decir setenta días. •El método del coito interrumpido no puede ser aceptado porque la contaminación vaginal produce un efecto negativo en la movilidad y supervivencia de los espermatozoides, además se corre el riesgo de perder la primera porción del eyaculado en el cual se encuentra un mayor número de espermatozoides móviles activos. •No se pueden repetir espermogramas con una diferencia menor de siete días. •Lo ideal es que la muestra se recoja en la intimidad de una dependencia próxima al laboratorio; de lo contrtario (en la casa) se debe hacer llegar al laboratorio antes de transcurrida una hora de la recolección. •El paciente debe ser remitido al Laboratorio Central para tomar la muestra. 12.5.2TOMA DE LA MUESTRA: •El paciente debe orinar antes de tomar la muestra y luego lavarse y enjuagarse bien el pene, para así evitar la contaminación bacteriana de la porción uretral. •La muestra debe obtenerse por masturbación y eyacularse dentro de un recipiente de vidrio o plástico de boca ancha que esté limpio o preferiblemente estéril, el recipiente debe estar tibio para reducir el shock por el frío. •No se debe usar condón porque comprometen la viabilidad de los espermatozoides. •El método del coito interrumpido no puede ser aceptado porque la contaminación vaginal produce un efecto negativo en la movilidad y supervivencia de los espermatozoides, además se corre el riesgo de perder la primera porción del eyaculado en el cual se encuentra un mayor número de espermatozoides móviles activos. •No se permite analizar muestras si se ha perdido alguna parte del eyaculado •La muestra debe protegerse de temperaturas extremas (menores de 20 grados centígrados, no refrigerar, ni mayores de 40 grados centígrados).

•Al entregar la muestra hacer que esta sea bien marcada con el nombre completo y apellidos, la fecha y hora de la recolección y el tiempo de abstinencia sexual.

12.6BACILOSCOPIA: Investigación de bacilos ácido alcohol resistentes (BAAR): 12.6.1RECOLECCIÓN DE ESPUTO: •Tomar muestra en ayunas. •Realizar un buen aseo bucal y un enjuague con una solución antiséptica para evitar la contaminación con la flora del tracto respiratorio superior. •Toser (expectorar) fuertemente para que la secreción se desprenda del árbol bronquial y pulmones, depositar la muestra en un frasco estéril de boca ancha. •Se recomienda que la muestra sea la primera de la mañana y en ayunas para evitar partículas de alimento. •Si el paciente tiene dificultad para expectorar, se recomienda que recoja la muestra mediante “drenaje postural”: Colocar la base del tórax sobre una almohada dejando caer los brazos y la cabeza hacia el piso con el fin de facilitar la salida de las secreciones bronquiales, tomar aire profundamente, retener el aire y expulsar violentamente con un esfuerzo de tos. •También facilita la obtención de la muestra mediante la inspiración de vapor de agua que favorece el desprendimiento de las secreciones bronquiales. Para la muestra de orina, con previo aseo de los genitales, recolectar en un recipiente estéril la última orina de la noche y la primera de la mañana y las que se emitan en ese lapso. 12.7EOSINÓFILOS EN MOCO NASAL: Debe recolectarse siempre material de ambas fosas nasales, por separado, a menos que el médico deseé estudiar específicamente una sola fosa nasal. 12.7.1PROCEDIMIENTO: •Tomar la muestra preferiblemente en el momento de la crisis rinítica. •Marcar dos porta objetos preferiblemente nuevos, limpios, secos y libres de grasa con la identificación del paciente y como fosa nasal derecha (FND) y fosa nasal izquierda (FNI). •Colocar una gota de solución de Turk (ácido acético glacial más azul de metileno) de la utilizada para el recuento de leucocitos en cada uno de los lugares en donde se va a extender la muestra.

•Con aplicador de algodón tomar la muestra de cada fosa nasal tratando de recoger abundante secreción, extenderla bien sobre la solución de Turk evitando que queden grumos, pues esto dificulta la cuantificación de los eosonófilos. •En caso de que la muestra este muy seca, humedecer el aplicador en solución salina antes de tomar la muestra para así tratar de arrastrar buena cantidad. •Descartar los aplicadores en solución desinfectante de hipoclorito de sodio. •Dejar secar al aire libre para luego colorear por Wright ó Giemsa.

12.8KOH PARA ESTUDIO DE HONGOS: •El paciente, no debe haber usado cremas o tópicos , Talcos , desodorantes , barniz de uñas 5 días antes de tomar la muestra, pues interfieren con el examen. •El paciente no debe haber tenido tratamientos antimicóticos 10 días previos al examen. •Limpiar el área de toma de la muestra con gasa humedecida en agua destilada estéril o alcohol (no utilizar algodón). •Realizar un raspado con cuchilla estéril o bisturí de los bordes de la lesión. •Tomar muestras de diferentes lesiones. •Recoger las escamas en un frasco estéril. •Siempre marcar las muestras con el sitio anatómico de donde fue tomada la muestra o donde se encuentra la lesión. • 13.TOMA DE MUESTRAS EN PARASITOLOGÍA

13.1COPROLÓGICO , COPROANÁLISIS , COPROGRAMA: •Recoger en la mañana en frasco limpio seco de boca ancha y tapa rosca. •No mezclar con orina. •No haber tomado laxantes en caso de estreñimiento. •Nunca refrigerar la muestra. •Coprológico seriado, recoger tres muestras día por medio. 13.2SANGRE OCULTA EN MATERIA FECAL El paciente debe haber seguido tres días antes del examen una dieta sin consumo de carnes Frías, carnes rojas, morcilla, ni sulfato ferroso . La dieta es mandatoria porque el examen se realiza para descartar hemorragias gastrointestinales producidas por gastritis o ulceras.

13.3PRUEBA PARA OXIUROS : •Técnica de Graham o de la cinta engomada. •El paciente , no se debe haber bañado. •Colocar la cinta adhesiva (en tubo) en la región perianal del paciente. •La cinta engomada puede colocársela el paciente en horas de la noche y retirarla en la mañana, pues los parásitos salen a poner sus huevos en la noche. •Colocar la cinta sobre una placa porta objetos apretando fuertemente.

14.TOMA DE MUESTRAS PARA MICROBIOLOGÍA (CULTIVOS).

14.1UROCULTIVOS : •Primera orina de la mañana. •Indicaciones previas y entrega de instructivos y frasco estéril. •Sembrar inmediatamente llegue la muestra en UROBACTER Previa agitación. Ver uso de UROBACTER en manual de procedimientos. •Anotar siempre la edad y sexo del paciente •Presencia o ausencia de embarazo y los meses de gestación. •Anotar si es control o no. 14.2COPROCULTIVOS : •No es necesario transportar en buffer glicerinado. •Muestra normal como para coprológico. •Anotar la edad del paciente y los tratamientos con drogas. 14.3CULTIVO PARA GONOCOCO -THAYER MARTÍN : •Seguir instrucciones de toma de muestra de secreción uretral para hombres y de flujo vaginal para mujeres. •Sembrar directamente en el sitio de la toma de la muestra. Ver uso de GONOBACTER en manual de procedimientos. •Con escobillón estéril, tomar un frotis del exocervix y sembrar en el medio Thayer Martín ( T.M.). •Con escobillón estéril , tomar parte de la secreción uretral o hacer un frotis de la lesión y sembrar en el medio Thayer Martín ( T.M.)

14.4ABSCESOS: Las muestras de abscesos de cualquier parte del cuerpo, deben ser tomadas por el bacteriólogo o auxiliares entrenadas directamente en el laboratorio, para ser sembradas inmediatasmente en los medios de cultivo apropiados evitando así la contaminación de las muestras por excesiva manipulación y transporte garantizando un resultado veraz. •Puncionar el absceso con aguja y jeringa estériles. •Si el absceso se ha reventado previamente, recolectar el material purulento valiéndose de espátula o asa bacteriológica estériles. •Colocar el material en recipiente de vidrio estéril con tapa o dejar el material obtenido en la jeringa y colocar el tapón de caucho en la aguja para evitar entrada de aire o contaminación a través de la aguja (en caso de remisión de la muestra). •Realizar los extendidos necesarios para coloración y exámen directo y destinar parte del material para cultivos, si se amerita. •Procesar la muestras antes de dos (2) horas. 14.5OTRAS MUESTRAS: Existen otras muestras que pueden ser procesadas en el laboratorio, su recolección o procedimiento esta exclusiva y estrictamente reservado al personal médico especialista. Generalmente estos especímenes son de manejo Hospitalario pero en ocasiones pueden ser procesadas a nivel particular, entre estos tenemos: •Lavado Broncoalveolar. •Líquido Cefalorraquídeo. •Secreciones Bronquiales. •Punción Suprapúbica. •Uso de Catéteres. •Material Ocular. •Líquido Pleural, pericárdico, peritoneal, articular o sinovial. •Lavado Gástrico. •Biopsias. •Médula Ósea. •Senos Paranasales y Faringe. •Hemocultivos. •Líquido Prostático.

•Estas muestras son tomadas y procesadas para la detección de agentes patógenos como virus, hongos, parásitos y bacterias; deben ser recolectadas en sitios muy limpios o estériles y en condiciones de asepsia especial para evitar que el paciente se contamine o complique por infecciones introducidas en la toma de la muestra. •Son muestras que deben ser transportadas inmediatamente al laboratorio para su análisis en forma muy estéril, deben ser manipuladas por el personal profesional o entrenado para ello. Su proceso debe ser antes de dos horas. •En caso de requerirse algún tipo de análisis de estos, la auxiliar debe llamar al laboratorio antes de ser tomada la muestra, para preparar los elementos, medios de cultivo y reactivos necesarios para su procesamiento. 14.6CULTIVOS DE AGUAS Y ALIMENTOS : Estas muestras deben ser tomadas por personal entrenado y ser remitidas al menos tiempo posible al laboratorio para su procesamiento, la auxiliar o persona encargada, debe comunicarse previamente con el Laboratorio. 15.TOMA DE MUESTRAS PARA CITOLOGÍA CERVICO VAGINAL

15.1ENTREVISTA: •Permitirle a la paciente que cuente con intimidad y asegurarle que los datos suministrados por ella son confidenciales. •Informarle a cerca del significado de la citología, tratarla muy delicadamente, con respeto y cortesía. •Motivarla para que reclame oportunamente el resultado. •No tomar la citología si la paciente se ha aplicado medicamentos intravaginales tres días o menos antes de la toma de muestra y/o si ha tenido relaciones sexuales en las 24-48 horas anteriores. •Explicación del procedimiento a la paciente. •Diligenciar el formulario para solicitud de la citología cervico-uterina: a)Tiempo de haberse practicado la última citología. b)Nombres completos. c)Edad. d)Gestaciones, partos, abortos. e)Fecha de la última menstruación. Si es menopáusica, fecha de esta. f)Método de planificación o anticoncepción. g)Tratamientos del cuello: Cauterización, Conozación, Radioterapia, Histerectomía (causas de esta y que tratamientos), otros y fecha. h)Síntomas actuales: Ninguno, Flujo anormal, Dolor pélvico, sangrado post-coito y postmenopausia, ardor, prurito, otros. •Rotular la lámina con el número de historia clínica, número del documento de identidad, y/o nombre de la paciente.

15.2PRECAUCIONES: •No hacer exploración bimanual antes de la toma de la muestra de citología cervico-uterina. •Usar el espéculo sin lubricantes, si es necesario se puede humedecer con agua destilada o agua estéril, nunca con solución salina, ésta inflama las células ocacionándonos una mala interpretación diagnóstica. •No usar laca para cabello como fijador, ya que altera la muestra en el momento de la coloración en el laboratorio. •No dejar secar la muestra al aire libre ni donde le penetre mucho viento; los artículos celulares del medio ambiente serán de tal magnitud que impedirán la adecuada lectura del frotis, inhabilitándolo para el diagnóstico. 15.3PROCEDIMIENTO: •Inicialmente se le debe pedir a la paciente que orine antes de colocarla en posición ginecológica para el examen, brindar un trato amable a la paciente. •Debemos tener muy bién marcada la placa y la orden respectivamente. •Se coloca la paciente en posición ginecológica evitando exposición innecesaria. Se debe estar lo más cómoda posible. •Con guantes estériles separar los labios mayores, observándolos cuidadosamente para ver si se encuentran cambios patológicos ( Quistes de Bartholine, condilomas, verrugas en periné que también simulen condilomas ), e informarlos en la hoja de historia. •Se procede a introducir el espéculo (sin lubricar) en sentido vertical, girarlo lentamente a la posición horizontal, se abre con suavidad para ir visualizando el cuello. •Visualizado el cuello, fijar el espéculo en posición abierta y atornillar. •Observar caracteristicas de vagina y cuello; identificar los sitios de la toma de citología; si existe moco, exudado purulento o sangre en la superficie del cuello, debe removerse suavemente con una torunda de algodón, gasa humedecida en agua estéril o agua destilada antes de la toma de la muestra. •Después de haber removido el moco o exudado del cuello, se procede a observar características del cuello : si se cree que es erosionada, soltar cuidadosamente el tornillo del espéculo tratando que el cuello quede en posición normal (como cerrado), si después de este proceso no se observa lesión rojiza al rededor del orificio endocervical, decimos que éste es sano, si es lo contrario se informa como erosionado, teniendo mucho cuidado en saberlo diferenciar de un ECTROPION. •Si la citología es funcional se toman tres muestras de la misma lámina procediendo así: a)Muestra Vaginal: Raspar ambas paredes (fondo lateral superior) con una espátula o bajalengua previamente humedecida con agua destilada o estéril. Realizar el extendido en forma horizontal, uniforme y delgado en el extremo de la lámina. Esta muestra servirá para observar los procesos infecciosos (Gardnerella, Tricomonas, Hongos, etc.).

b)Muestra Exocervical: Tomar la muestra de la unión escamocolumnar de igual forma con una espátula o bajalengua previamente humedecida en agua destilada o estéril haciéndola girar a 360 grados con presión firme (raspar epitelio, no olvidar que la muestra citológica es abrasiva , no interesa el flujo sino el epitelio ), teniendo cuidado de no tocar las paredes de la vagina para evitar contaminación con células de la porción inferior de las paredes vaginales o del fondo de los sacos laterales (Saco de Douglas), realizar un extendido en forma horizontal, uniforme y delgado en el centro de la lámina. Esta muestra es fundamental para detectar el Cáncer de cervix, pues allí en la unión Escamo-Columnar es donde se inicia el Cáncer de cervix. c)Muestra Endocervical: Con un citocepillo previamente humedecido con agua destilada o estéril introducirlo suavemente en el canal endocervical, hasta la parte donde se encuentre un obstáculo o donde terminen las cerdas, se procede a girarlo 360 grados con presión firme tratando de rozar las paredes endocervicales; retirarlo suavemente, realizar el extendido en el extremo izquierdo al lado del número, en forma horizontal o circular uniforme y delgado, girando el citocepillo en redondo (360 grados) sobre la lámina, de tal manera que el epitelio endocervical quede adherido en ella. En la citología oncológica solo se toman 2 muestras: Exocervical y Endocervical. A través de esta muestra podremos detectar un Adenocarcinoma o alteraciones específicamente en células endocervicales, que son de tipo Columnar. Citologicamente nos damos cuenta de la calidad de la muestra al poder observar éstas células.

•Fijar la lámina inmediatamente después de la toma de la muestra por medio de una de las siguientes técnicas: a)Atomizador (Citospray), contiene propinilglicol, se debe utilizar dejando una distancia aproximada de 20 a 20 cms. entre la lámina y el atomizador, esparciendo en forma uniforme y delgada evitando dejar una película gruesa que ayuda a lavar la placa y alterar así el diagnóstico citológico; posteriormente dejar secar al medio ambiente, durante 5 minutos, Este método es apropiado para las citologías que van a ser remitidas a otros laboratorios; previamente envueltas en cada historia correspondiente se proceden a ser empacadas y rotuladas para el envío. b)Fijador liquido, es alcohol etílico al 95%. Una ves tomada la citología, se sumerge la lámina en el recipiente con el alcohol por 15 minutos hasta empezar el proceso de coloración. También existe otro fijador que es la mezcla de alcohol etílico al 95% y el polietilglicol; una vez tomada la citología se debe aplicar con un gotero 4 o 5 gotas del fijador sobre la superficie de la lámina y con movimientos de inclinación y vaivén esparcir las gotas sobre la superficie y dejar secar al medio ambiente. Este método también es utilizado para transportar las muestras citológicas a los laboratorios en la misma forma del fijador Citospray. •Destornillar el espéculo y extraerlo suavemente de la vagina. •Registrar las características del cuello: Sano, Erosionado, Ectropión, Congestivo, Pólipos, Quistes de Naboth, Leucoplasia, Eritroplasia, Atrófico, Condilomas, etc. •Registrar las características de la vagina: Condilomas, Quistes de Gardner, etc. •Registrar las características de la Vulva: Leucoplasia, Quistes de Bartholine, Condiloma acuminado, Herpes, etc. •Se procede finalmente a realizar la limpieza desechando el material y equipo de toma de muestra de acuerdo con las precauciones de eliminación de desechos y bioseguridad conocidas y requeridas. Nota: Si al tomar el examen se observa abundante flujo vaginal, se debe tomar primero Directo y Gram de flujo vaginal, luego limpiar muy bien el flujo con aplicador y proceder a tomar la muestra. 16.TOMA DE MUESTRAS PARA PRUEBAS ESPECIALIZADAS Generalmente son muestras de suero o plasma utilizando anticoagulante EDTA o heparina que deben ser prontamente separadas de las células rojas, protegidas de la exposición a la luz, preferiblemente sin hemólisis y llevadas a refrigeración o congelamiento para evitar la perdida o deterioro de sus componentes a analizar. Las muestras no requieren de un ayuno previo del paciente por lo cual pueden ser tomadas en cualquier momento pero si es posible se evitan muestras lipémicas que producen algunas interferencias. El volumen mínimo es de un mililitro (1 ml) para su análisis. Muestras hemolizadas, ictéricas, lipémicas o contaminadas son generalmente inadecuadas para estas pruebas.

1.Perfil Tiroideo ( T-3 , T-4 , TSH ). 2.Gonodotropina Coriónica ( B-HCG ) cualitativa y cuantitativa. 3.Prolactina, preferiblemente una muestra a las diez de la mañana en completo ayuno. 4.Hormona Luteinizante ( LH ). 5.Hormona Folículo Estimulante ( FSH ). 6.Anticuerpos Antinucleares ( ANA ). 7.Inmunoglobulinas: Ig E , Ig M , Ig G, Ig A totales cada una. 8.Inmunoglobulinas Ig G e Ig M ( Rubéola - Toxoplasma - Citomegalovirus CMV). 9.Antígenos para cáncer: ACE, CA 125, Ca 15-3, AEP, 10.Drogas: Carbamazepina, Digoxina, Litio, Teofilina, Ciclosporina, Fenitoina, Primidona. 11.Vitaminas: B12, A, D, C., Acido Folico. 12.Anticuerpos Ig G o Ig M contra: ANA, Antimycoplasma, VIH, Hepatitis A, Hepatitis B, Hepatitis C, Antimicrosomales, Toxoplasma, Rubéola, Antitiroglobulínicos, 13.Hormonas: Androstenodiona, Antidiuretica ADH (Vasopresina), del Crecimiento (GH), Insulina, 14.Pruebas Serológicas. 15.Enzimas: Aldosterona, Amilasa en suero o en orina ( orina recolectada durante dos horas es suficiente), GOT (AST), GPT (ALT), Creatin-fosfoquinasa Total y MB, Colinesterasa, Gama Glutamil Transpeptidasa, Lipasa, •Sangrar

en tubo seco sin anticoagulante, 10 ml para todas las pruebas. ( suero ). •Preferiblemente ayuno de 8 horas, pero se pueden tomar en cualquier momento. •Estas muestras de suero no deben ser hemolizadas. LA MUESTRA DE ORINA DE 24 HORAS se utiliza para realizar las siguientes pruebas: Depuración de Creatinina. Albumina. Cortisol libre en orina. Acido Delta Aminolevulinico (ALA). Catecolaminas Calcio. Acido Vanilmandelico (VMA) Cloro. Cortisol. Acido 5-Hidroxiindolacetico (5-HIAA). Acido Urico. Aldosterona. Fenilcetonuria (FCU). Sodio. Proteinas. Creatinina. Estriol. Porfirinas. Testosterona. Estrogenos fraccionados. Pregnadiol. Potasio Hormona Foliculo Estimulante (FSH). Porfobilinogeno. Cetosteroide neutros (17 Cetosteroides, 17 hidroxicorticosteroides) Esta muestra en su recoleccion, deberá estar siempre refrigerada. Ver recoleccion de orina de 24 horas. El Acido Vanilmandelico (VMA), deben ser recogidos preferiblemente en recipientes plásticos y la orina acidificada con 20 mililitros de solución 6 mol/L de HCL; y se debe evitar la ingestión 48 horas antes de Banano, Café, Té, Chocolate, Vainilla y Plátanos. El Acido 5-Hidroxiindolacetico (5-HIAA), debe recogerse con 15 mililitros de solución 6mol/L de HCL o 15 c.c de ácido acético glacial al 33%, guerdandola en refrigeración.

La Aldosterona y las Catecolaminas, Estriol, con adición de 15 gramos de ácido bórico. El Cortisol, con 20 c.c. de ácido acético glacial al 33%. TUBOS HEPARINIZADOS: Se utiliza en algunos estudios de rutina como especializados. Su presentación puede incluir concentraciones de sodio o litio. En general, la heparina con litio es utilizada para estudios de química y la heparina sódica se utiliza para estudio de linfocitos (p.ej. HLA). También para muestras como la Hormona Adrenocorticotrófica (ACTH), Linfocitos T4 y T8, Amonio,Antigeno HLA-B27 (Linfocitario Humano B27), Cariotipo, Celulas LE con perlas de vidrio, Gases Arteriales,

17. REMISIÓN TRANSPORTE Y ENVÍO DE MUESTRAS •Limpiar bien los recipientes para marcar y evitar así el desprendimiento de las etiquetas adhesivas. •No marcar muestras en las tapas , hacerlo siempre en los recipientes. •Marcar con Nombres y apellidos, código de recepción y edad. •Envolver las placas en papel higiénico y siempre colocarlas en bolsa plástica. •No permitir que las placas sean colocadas en la nevera de transporte . •Enviar orinas y coprológicos por separado y en bolsas plásticas. Apretar bien las tapas. •Separar tubos con sueros, hemogramas y coágulos para agilizar la recepción de muestras, las bolsas plásticas deben ser color rojo. •Marcar cada una de las bolsas. •Recordar siempre al transportador que las muestras líquidas deben ir paradas. • Registrar en la hoja de remisión todas las muestras, por paciente, análisis, cedula, numero interno si es del caso, edad, y hora de entrega, etc. • Verificar que la nevera transportadora lleva gradilla y termómetro. 20. REMISION DE MUESTRAS DE ONCOLOGIA (CITOMETRIAS DE FLUJO, BIOPSIAS, CARIOTIPOS, MIELOGRAMAS, COLORACIONES ESPECIALES E INMUNOHISTOQUIMICA))

Estas son consideradas como muestras especiales, por las características de la muestra, por ser invasiva su toma y por ser remitidas a entidades especiales. Solo se toman y reciben en el laboratorio de Lunes a Jueves. Esto porque beben ser procesadas el mismo día y leídas al día siguiente, y no se podría en fin de semana. Son tomadas por los médicos oncólogos y hematólogos, quienes toman un tubo tapa lila para clasificación inmunológica de leucemia, un tubo o frasco con reactivo o conservante de Bown para la biopsia, y varias placas fijadas a temperatura ambiente para los mielogramas y coloraciones especiales e inmunohistoquímnica.

Se transportan inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente y así deben conservarse hasta por 24 horas, o a temperatura de refrigeración hasta por 48 horas máximo. Se fotocopian las ordenes, se entrega original y copia al mensajero para que regrese la copia firmada de recibido. Los mielogramas, biopsias de medula, citometrias de clasificación inmunológica de leucemia y de células madre, coloraciones especiales e inmunohistoquímica se remiten al HPTU. Los cariotipos al laboratorio de Citogenética de la UdeA CIU. Los HTLA para estudio de compatibilidad al laboratorio de Citometría y Genética de la UdeA CIU. Estos entregan resultados por vía electrónica al correo del banco de sangre y de la dirección del laboratorio.

18.BIBLIOGRAFÍA: 1.Yen, Samuel S. C. Jaffe, Robert B. Endocrinología de la Reproducción : Fisiología, Fisiopatología y manejo Clínico. Tercera Edición. Editorial Médica Panamericana. Buenos Aires (Argentina), 1993. p 977. 2.Todd- Sanford-Davisohn. Diagnóstico y tratamiento Clínicos por el Laboratorio. Octava Edición. Salvat Editores, Barcelona (España ), 1988. p 613-623.

3.Angel, M. Gilberto. Interpretación Clínica del Laboratorio. Cuarta Edición. Editorial Panamericana, Bogotá, 1993. p. 387. 4.Miale, John B. Hematología. Medicina de Laboratorio. Sexta edición. Editorial Reverté, S.A. Barcelona, 1985. 5.Eduardo, Gómez G. Alberto Gómez G. Manual para la Obtención de Muestras en el Laboratorio Clínico. Laboratorio y Medicina. Primera edición. editorial Diseditorial, Santafé de Bogotá, 1996. 6.Angel M, Gilberto. Diccionario del Laboratorio Clínico. Primera Edición, Editorial Médica Internacional. Bogotá, Colombia, 1996.